Размер шрифта
Цветовая схема
Изображения
Форма
Межсимвольный интервал
Межстрочный интервал
стандартные настройки
обычная версия сайта
закрыть
  • Вход
  • Регистрация
  • Помощь
Выбрать БД
Простой поискРасширенный поискИстория поисков
ГлавнаяРезультаты поиска
СтатьяИскать документыПерейти к записи. 2024; Т. 8, № 4: Хирургия. Урология: 186–194. DOI:10.32364/2587-6821-2024-8-4-1
Лапароскопическая продольная резекция желудка: отдаленные результаты и предикторы рецидива ожирения
Искать документыПерейти к записи[1,2]
Искать документыПерейти к записи[1,3,4]
Искать документыПерейти к записи[1]
Искать документыПерейти к записи[1,4]
Искать документыПерейти к записи[1]
Искать документыПерейти к записи[1]
Искать документыПерейти к записи[3]
Искать документыПерейти к записи[1]
Искать документыПерейти к записи[5]
Искать документыПерейти к записи[1,4]
Искать документыПерейти к записи[3]
Аффилированные организации
[1]Искать документыПерейти к записи
[2]Искать документыПерейти к записи
[3]Искать документыПерейти к записи
[4]Искать документыПерейти к записи
[5]Искать документыПерейти к записи
Аннотация

Введение: морбидное ожирение в настоящее время представляет собой серьезную медико-социальную проблему. Наиболее эффективным методом лечения этого заболевания остаются бариатрические операции. Чтобы обеспечить более прецизионный отбор пациентов для подобных вмешательств, необходимо определить предикторные факторы различных исходов лечения.

Цель исследования: оценить отдаленные результаты лапароскопической продольной резекции желудка (ЛПРЖ) и определить перечень генов, ассоциированных с рецидивом ожирения в отдаленном послеоперационном периоде.

Материал и методы: в исследование включены пациенты с ожирением (n=81) (средний возраст 44,80±1,26 года, мужчин — 27,16[%] (n=22)), госпитализированные в хирургическое отделение СПб ГБУЗ «Городская больница № 40». Всем пациентам была выполнена ЛПРЖ.

После выписки из стационара пациентов наблюдали в течение 5 лет амбулаторно. Затем пациенты были распределены в 2 группы: 64 (79,0[%]) пациента в группу стойкой потери веса и 17 (21,0[%]) — в группу рецидива ожирения.

Всем пациентам, включенным в исследование, выполнено полное секвенирование экзома.

Результаты исследования: на основании результатов t-теста выявлено 22 гена (CARD8, FMC1, MUC16, MUC21, HTR3D, MAMDC4, IFNK, HLA-DQB1, LUC7L2, KIR3DL1, LILRB4, RBBP6, ANKRD30A, ABCC12, LRRIQ3, PDE6B, OR5H15, CCDC187, PMIS2, SAMD11, PTCHD3, AKR7L), мутации в которых предположительно связаны с рецидивом ожирения после ЛПРЖ (p

Ключевые слова
Искать документыПерейти к записи
Искать документыПерейти к записи
Искать документыПерейти к записи
Искать документыПерейти к записи
Искать документыПерейти к записи
Искать документыПерейти к записи
Искать документыПерейти к записи
Искать документыПерейти к записи
Литература

1. Дедов И.И., Мокрышева Н.Г., Мельниченко Г.А. и др. Ожирение. Consilium Medicum. 2021;23(4):311–325.Dedov I.I., Mokrysheva N.G., Melnichenko G.A. et al. Obesity. Consilium Medicum. 2021;23(4):311–325 (in Russ.).
DOI: 10.26442/20751753.2021.4.200832.

2. Obesity and overweight. (Electronic resource.)https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/obesity-and-overweight (access date: 20.01.2024).

3. Дедов И.И., Шестакова М.В., Галстян Г.Р. Распространенность сахарного диабета 2 типа у взрослого населения России (исследование NATION). Сахарный диабет. 2016;19(2):104–112.Dedov I.I., Shestakova M.V., Galstyan G.R. The prevalence of type 2 diabetes mellitus in the adult population of Russia (NATION study). Diabetes mellitus. 2016;19(2):104–112 (in Russ.).
DOI: 10.14341/DM2004116-17.

4. El Ansari W., Elhag W. Weight Regain and Insufficient Weight Loss After Bariatric Surgery: Definitions, Prevalence, Mechanisms, Predictors, Prevention and Management Strategies, and Knowledge Gaps-a Scoping Review. Obes Surg. 2021;31(4):1755–1766.
DOI: 10.1007/s11695-020-05160-5.

5. Gupta S.R., Zhou Y., Wadden T.A. et al. A Systematic Review of Genetic Correlates of Weight Loss After Bariatric Surgery. Obes Surg. 2021;31(10):4612–4623.
DOI: 10.1007/s11695-021-05585-6.

6. Yang P.J., Chen C.L., Chen C.N. et al. Early weight loss as a predictor of 3-year weight loss and weight regain in patients with good compliance after sleeve gastrectomy. Surg Obes Relat Dis. 2021;17(8):1418–1423.
DOI: 10.1016/j.soard.2021.03.023.

7. Carbajo M.A., Jiménez J.M., Luque-de-León E. et al. Evaluation of Weight Loss Indicators and Laparoscopic One-Anastomosis Gastric Bypass Outcomes. Sci Rep. 2018;8(1):1961.
DOI: 10.1038/s41598-018-20303-6.

8. Мирзорустамова А.М., Чернов А.Н., Ветошкин В.А. и др. Динамика антропометрических показателей у пациентов с ожирением при кор-рекционной терапии трофологического статуса после бариатрической хирургии. РМЖ. 2023;8:2–7.Mirzorustamova A.M., Chernov A.N., Vetoshkin V.A. et al. Changes in anthropometric parameters in obese patients during management of nutritional status after bariatric surgery. RMJ. 2023;8:2–7 (in Russ.).

9. Основы бариатрической медицины: практическое руководство. Под ред. Фишмана М.Б. СПб.: Издательско-полиграфическая ассоциация высших учебных заведений; 2019.Fundamentals of bariatric medicine: a practical guide. Fishman M.B., ed. St. Petersburg: Publishing and Printing Association of Higher Educational Institutions; 2019 (in Russ.).

10. Lei Y., Yang J., Li H. et al. Changes in glucose-lipid metabolism, insulin resistance, and inflammatory factors in patients with autoimmune thyroid disease. J Clin Lab Anal. 2019;33(7):e22929.
DOI: 10.1002/jcla.22929.

11. Ветошкин В.А., Гладышев Д.В., Моисеев М.Е. и др. Предоперационные предикторы рецидива ожирения после лапароскопической продольной резекции желудка. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2023;(9):40–44.Vetoshkin V.A., Gladyshev D.V., Moiseev M.E. et al. Preoperative predictors of obesity recurrence after laparoscopic gastrectomy. Pirogov Russian Journal of Surgery. 2023;(9):40–44 (in Russ.).
DOI: 10.17116/hirurgia202309140

12. Tsetsos F., Roumeliotis A., Tsekmekidou X. et al. Genetic variation in CARD8, a gene coding for an NLRP3 inflammasome-associated protein, alters the genetic risk for diabetic nephropathy in the context of type 2 diabetes mellitus. Diab Vasc Dis Res. 2020;17(6):1479164120970892.
DOI: 10.1177/1479164120970892.

13. Joo N.S., Kim K.N., Kim K.S. Serum CA125 concentration has inverse correlation with metabolic syndrome. J Korean Med Sci. 2011;26(10):1328–1332.
DOI: 10.3346/jkms.2011.26.10.1328.

14. National Library of Medicine. Gene. (Electronic resource.)https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene (access date: 13.03.2023).

15. Van Galen K.A., Ter Horst K.W., Serlie M.J. Serotonin, food intake, and obesity. Obes Rev. 2021;22(7):e13210.
DOI: 10.1111/obr.13210.

16. Jiang Q., Sun L., Lu Y. et al. Identification of related long non-coding RNAs and mRNAs in subclinical hypothyroidism complicated with type 2 diabetes by transcriptome analysis — a preliminary study. Endokrynol Pol. 2020;71(3):213–226.
DOI: 10.5603/EP.a2020.0025.

17. Meeks K.A.C., Bentley A.R., Gouveia M.H. et al. Genome-wide analyses of multiple obesity-related cytokines and hormones informs biology of cardiometabolic traits. Genome Med. 2021;13(1):156.
DOI: 10.1186/s13073-021-00971-2.

18. Xu Y., Ma M., Ippolito G.C. et al. Complement activation in factor D-deficient mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 2001;98(25):14577–14582.
DOI: 10.1073/pnas.261428398.

19. Milek M., Moulla Y., Kern M. et al. Adipsin Serum Concentrations and Adipose Tissue Expression in People with Obesity and Type 2 Diabetes. Int J Mol Sci. 2022;23(4):2222.
DOI: 10.3390/ijms23042222.

20. Napolitano A., Lowell B.B., Damm D. et al. Concentrations of adipsin in blood and rates of adipsin secretion by adipose tissue in humans with normal, elevated and diminished adipose tissue mass. Int J Obes Relat Metab Disord. 1994;18(4):213–218

21. Mesev E.V., LeDesma R.A., Ploss A. Decoding type I and III interferon signalling during viral infection. Nat Microbiol. 2019;4(6):914–924.
DOI: 10.1038/s41564-019-0421-x.

22. Gao Y., Zhao H., Wang P. et al. The roles of SOCS3 and STAT3 in bacterial infection and inflammatory diseases. Scand J Immunol. 2018;88(6):e12727.
DOI: 10.1111/sji.12727.

23. Terán-Cabanillas E., Hernández J. Role of Leptin and SOCS3 in Inhibiting the Type I Interferon Response During Obesity. Inflammation. 2017;40(1):58–67.
DOI: 10.1007/s10753-016-0452-x.

24. Su R., Dong L., Li Y. et al. Targeting FTO Suppresses Cancer Stem Cell Maintenance and Immune Evasion. Cancer Cell. 2020;38(1):79–96.e11.
DOI: 10.1016/j.ccell.2020.04.017.

25. Saunders C.L., Chiodini B.D., Sham P. et al. Meta-analysis of genome-wide linkage studies in BMI and obesity. Obesity (Silver Spring). 2007;15(9):2263–2275.
DOI: 10.1038/oby.2007.269.

26. Xiao C., Wu G., Zhou Z. et al. RBBP6, a RING finger-domain E3 ubiquitin ligase, induces epithelial-mesenchymal transition and promotes metastasis of colorectal cancer. Cell Death Dis. 2019;10(11):833.
DOI: 10.1038/s41419-019-2070-7.

27. Ntwasa M. Retinoblastoma Binding Protein 6, Another p53 Monitor. Trends Cancer. 2016;2(11):635–637.
DOI: 10.1016/j.trecan.2016.10.003.

28. Itahana Y., Itahana K. Emerging Roles of p53 Family Members in Glucose Metabolism. Int J Mol Sci. 2018;19(3):776.
DOI: 10.3390/ijms19030776.

29. Jourdain A.A., Begg B.E., Mick E. et al. Loss of LUC7L2 and U1 snRNP subunits shifts energy metabolism from glycolysis to OXPHOS. Mol Cell. 2021;81(9):1905–1919.e12.
DOI: 10.1016/j.molcel.2021.02.033.

30. Prieto M., Krochik A.G., Chaler E. et al. Obesidad y factores de riesgo del síndrome metabólico en jóvenes con diabetes tipo 1 [Obesity and risk factors for metabolic syndrome in young people with type 1 diabetes]. Medicina (B Aires). 2012;72(4):291–297 (in Spanish)

31. Barnes I.H.A., Ibarra-Soria X., Fitzgerald S. et al. Expert curation of the human and mouse olfactory receptor gene repertoires identifies conserved coding regions split across two exons. BMC Genomics. 2020;21(1):196.
DOI: 10.1186/s12864-020-6583-3.

32. Curtis D., Vine A.E., McQuillin A. et al. Case-case genome-wide association analysis shows markers differentially associated with schizophrenia and bipolar disorder and implicates calcium channel genes. Psychiatr Genet. 2011;21(1):1–4.
DOI: 10.1097/YPG.0b013e3283413382.

33. Sangermano R., Biswas P., Sullivan L.S. et al. Identification of a novel large multigene deletion and a frameshift indel in PDE6B as the underlying cause of early-onset recessive rod-cone degeneration. Cold Spring Harb Mol Case Stud. 2022;8(7):a006247.
DOI: 10.1101/mcs.a006247.

34. Lee D.H., Ko J.J., Ji Y.G. et al. Proteomic identification of RREB1, PDE6B, and CD209 up-regulated in primitive gut tube differentiated from human embryonic stem cells. Pancreas. 2012;41(1):65–73.
DOI: 10.1097/MPA.0b013e3182223e35.

35. Pham D.H., Kudira R., Xu L. et al. Deleterious Variants in ABCC12 are Detected in Idiopathic Chronic Cholestasis and Cause Intrahepatic Bile Duct Loss in Model Organisms. Gastroenterology. 2021;161(1):287–300.e16.
DOI: 10.1053/j.gastro.2021.03.026.

36. Balafoutas D., zur Hausen A., Mayer S. et al. Cancer testis antigens and NY-BR-1 expression in primary breast cancer: prognostic and therapeutic implications. BMC Cancer. 2013;13:271.
DOI: 10.1186/1471-2407-13-271.

37. Pasternak A.J., Hamonic G.M., Van Kessel A., Wilson H.L. Postnatal regulation of MAMDC4 in the porcine intestinal epithelium is influenced by bacterial colonization. Physiol Rep. 2016;4(21):e13018.
DOI: 10.14814/phy2.13018.

Дополнительная информация
Язык текста: Русский
ISSN: 2587-6821

URI:4d45445245564945572d41525449434c452d323032342d382d342d505249565449544c2d3138362d313934

Унифицированный идентификатор ресурса для цитирования: //medj.rucml.ru/journal/4d45445245564945572d41525449434c452d323032342d382d342d505249565449544c2d3138362d313934/