Введение.Введение. Матричные РНК (мРНК) FCGR3A и FCGR3B транслируют синтез мембранных молекул CD16A и CD16B, являющихся низкоаффинными рецепторами иммуноглобулина (Ig) G на разных клетках иммунной системы и участвующих в иммунном ответе на опухоли.Цель исследования – определение в периферической крови больных раком предстательной железы (РПЖ) уровня мРНК FCGR3A и мРНК FCGR3B.Материалы и методы.Материалы и методы. Исследовали образцы крови 47 больных РПЖ и 31 здорового донора крови. Относительный уровень мРНК FCGR3A и FCGR3B в крови больных и здоровых доноров определяли с помощью полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией в реальном времени.Результаты.Результаты. Показано, что относительный уровень мРНК FCGR3A и FCGR3B в крови больных РПЖ превышает уровень, регистрируемый у волонтеров. Относительный уровень мРНК FCGR3A повышается с возрастом, при увеличении концентрации простатспецифического антигена (ПСА), объема и жесткости предстательной железы и при наличии метастазов. Различия в концентрации тестостерона, индексе Глисона, стадии заболевания и распространенности опухоли не сопровождались изменениями в уровне мРНК FCGR3A. Для мРНК FCGR3В выявлен другой характер изменений. С увеличением концентрации ПСА и жесткости простаты повышенный уровень мРНК FCGR3В снижался, приближаясь к норме. В отсутствие метастазов он был выше, чем при их наличии. Регистрированы тенденции к повышению уровня мРНК FCGR3В при увеличении стадии заболевания, концентрации тестостерона до 7 ммоль/л и выше, а также градации индекса Глисона до 7 и более.Заключение.Заключение. Обнаружены разнонаправленные изменения уровня мРНК FCGR3A и мРНК FCGR3B с повышением тяжести течения РПЖ. Вероятно, выявленный характер изменения уровня мРНК FCGR3A и мРНК FCGR3B связан с дозозависимым действием ПСА на их уровень. Результаты указывают на возможное мониторинговое значение уровня мРНК FCGR3A и мРНК FCGR3B в крови больных РПЖ.
Wu J., Mishra H.K., Walcheck B. Role of ADAM17 as a regulatory checkpoint of CD16A in NK cells and as a potential target for cancer immunotherapy. J Leukoc Biol 2019;105(6):1297–303. DOI: 10.1002/JLB.2MR1218-501R.
DOI: 10.1002/JLB.2MR1218-501R
Golay J., Valgardsdottir R., Musaraj G. et al. Human neutrophils express low levels of FcγRIIIA, which plays a role in PMN activation. Blood 2019;133(13):1395–405. DOI: 10.1182/blood-2018-07-864538.
DOI: 10.1182/blood-2018-07-864538
Gillis C., Gouel-Chéron A., Jönsson F., Bruhns P. Contribution of human FcγRs to disease with evidence from human polymorphisms and transgenic animal studies. Front Immunol 2014;5:254. DOI: 10.3389/fim-mu.2014.00254.
DOI: 10.3389/fim-mu.2014.00254
Millrud C.R., Kagedal A., Kumlien Georen S. et al. NETproducing CD16high CD62Ldim neutrophils migrate to tumor sites and predict improved survival in patients with HNSCC. Int J Cancer 2017;140(11):2557–67. DOI: 10.1002/ijc.30671.
DOI: 10.1002/ijc.30671
Lecot P., Sarabi M., Abrantes M.P. et al. Neutrophil heterogeneity in cancer: from biology to therapies. Front Immunol 2019;10:2155. DOI: 10.3389/fimmu.2019.02155.
DOI: 10.3389/fimmu.2019.02155
Барышников А.Ю., Тоневицкий А.Г. Моноклональные антитела в лаборатории и клинике. М.: Медицина, 1997. 212 с.
Красногорова Н.В., Новиков Д.В., Фомина С.Г. и др. Уровень мРНК CD16A и CD16B как потенциальный иммунологический маркер при колоректальном раке. Бюллетень сибирской медицины 2019;18(1):220–27. DOI: 10.20538/1682-0363-2019-1-220-227.
DOI: 10.20538/1682-0363-2019-1-220-227
Alyasova A.V., Amoev Z.V., Shkola O.O. et al. Messenger RNA of FCGR3A and FCGR3B genes as monitoring markers of clear cell renal adenocarcinoma (a pilot study). Sovrem Tekhnologii Med = Modern Technologies in Medicine 2022;14(3):22–7. DOI: 10.17691/stm2022.14.3.03.
DOI: 10.17691/stm2022.14.3.03
Зубеев П.С., Коровин О.А., Севрюков Ф.А., Святозарский Н.Л. Наш опыт применения соноэластографии простаты при заболеваниях предстательной железы. Андрология и генитальная хирургия 2013;14(2):60–4. DOI: 10.17650/2070-9781-2013-2-60-64.
DOI: 10.17650/2070-9781-2013-2-60-64
Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2–ΔΔCT method. Methods 2001;25(4):402–8. DOI: 10.1006/meth.2001.1262.
DOI: 10.1006/meth.2001.1262
Solana R., Campos C., Pera A., Tarazona R. Shaping of NK cell subsets by aging. Curr Opin Immunol 2014;29:56–61. DOI: 10.1016/j.coi.2014.04.002.
DOI: 10.1016/j.coi.2014.04.002
De Maeyer R.P.H., Chambers E.S. The impact of ageing on monocytes and macrophages. Immunol Lett 2021;230:1–10. DOI: 10.1016/j.imlet.2020.12.003.
DOI: 10.1016/j.imlet.2020.12.003
Gasparoto T.H., Dalboni T.M., Amôr N.G. et al. Fcγ receptors on aging neutrophils. J Appl Oral Sci 2021;29:e20200770. DOI: 10.1590/1678-7757-2020-0770.
DOI: 10.1590/1678-7757-2020-0770
Nah E.H., Kim S., Cho S., Cho H.I. Complete blood count reference intervals and patterns of changes across pediatric, adult, and geriatric ages in Korea. Ann Lab Med 2018;38(6):503–11. DOI: 10.3343/alm.2018.38.6.503.
DOI: 10.3343/alm.2018.38.6.503
Bonk S., Kluth M., Hube-Magg C. et al. Prognostic and diagnostic role of PSA immunohistochemistry: a tissue microarray study on 21,000 normal and cancerous tissues. Oncotarget 2019;10(52):5439–53. DOI: 10.18632/oncotarget.27145.
DOI: 10.18632/oncotarget.27145
Cohen P., Peehl D.M., Lamson G., Rosenfeld R.G. Insulin-like growth factors (IGFs), IGF receptors, and IGF-binding proteins in primary cultures of prostate epithelial cells. J Clin Endocrinol Metab 1991;73(2):401–7. DOI: 10.1210/jcem-73-2-401.
DOI: 10.1210/jcem-73-2-401
Bindukumar B., Schwartz S.A., Nair M.P. et al. Prostate-specific antigen modulates the expression of genes involved in prostate tumor growth. Neoplasia 2005;7(3):241–52. DOI: 10.1593/neo.04529.
DOI: 10.1593/neo.04529
Al-Nasralla A.S.H., Hussian S.S., Tektook N.K. Immunological analysis of interleukin-10 (IL-10), tumor necrosis factor-a (TNF-a), and prostate-specific antigen (PSA) in benign and malignant prostate cancer. Hum Antibodies 2023;Prepress:1–9. DOI: 10.3233/HAB-220018.
DOI: 10.3233/HAB-220018
Sciarra F., Campolo F., Franceschini E. et al. Gender-specific impact of sex hormones on the immune system. Int J Mol Sci 2023;24(7):6302. DOI: 10.3390/ijms24076302.
DOI: 10.3390/ijms24076302
Gagliano-Jucá T., Pencina K.M., Guo W. et al. Differential effects of testosterone on peripheral neutrophils, monocytes and platelets in men: findings from two trials. Andrology 2020;8(5):1324–31. DOI: 10.1111/andr.12834.
DOI: 10.1111/andr.12834
Raison N., Servian P., Patel A. et al. Is tumour volume an independent predictor of outcome after radical prostatectomy for high-risk prostate cancer? Prostate Cancer Prostatic Dis 2023;26(2):282–6. DOI: 10.1038/s41391-021-00468-4.
DOI: 10.1038/s41391-021-00468-4
Ариуа Х., Новиков Д.В., Коровин О.А. и др. Изменения в экспрессии генов, кодирующих молекулы CD16A и CD16В, при доброкачественной гиперплазии предстательной железы. Иммунопатология, аллергология, инфектология 2023;4:79–84. DOI: 10.14427/jipai.2023.4.79.
DOI: 10.14427/jipai.2023.4.79
Thörmer G., Reiss-Zimmermann M., Otto J. et al. Novel technique for MR elastography of the prostate using a modified standard endorectal coil as actuator. J Magn Reson Imaging 2013;37(6):1480–5. DOI: 10.1002/jmri.23850.
DOI: 10.1002/jmri.23850
Wang Y., Dong X., Qu Z. et al. Correlation between peripheral blood neutrophil-lymphocyte ratio and CD34 expression in prostate cancer. BMC Cancer 2020;20(1):900. DOI: 10.1186/s12885-020-07382-3.
DOI: 10.1186/s12885-020-07382-3