При изучении популяционного состава 41 природного штамма Vibrio cholerae эльтор биовара получены новые данные о популяционной гетерогенности природных штаммов. Обнаружено 12 штаммов, формирующих типичные прозрачные и атипичные мутные колонии. Среди последних выявлено 3 штамма, вариабельность морфологии которых коррелировала с изменением продукции экзополисахарида, холерного токсина, гемолизина, растворимой гемагглютинин/протеазы и подвижности. Одним из внешних сигналов, вызывающих координированное переключение продукции указанных факторов патогенности и персистенции является щелочная (рН 9,0) реакция среды. Возможно, переключение «прозрачные-мутные» варианты относится к одной из форм фазовых вариаций и необходимо V. cholerae для выживания в изменяющихся условиях внешней среды.
Адамов А.К., Наумшина М.С. Холерные вибрионы. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та; 1984. 328 с.
Исаев Н.Д., Лозовский Ю.В., Заднова С.П., Смирнова Н.И. Популяционная неоднородность природных штаммов Vibrio cholerae классического биовара: координированное изменение морфологии колоний, подвижности, токсигенности и ферментативных свойств. Пробл. особо опасных инф. 2005; 1(89):43-6.
Милютин В.Н., Дрожевкина М.С., Ломов Ю.М., Уралева В.С., Либинзон А. Е., Подосинникова Л.С. Механизмы и диапазон изменчивости холерных вибрионов. Ростов н/Д: Ростовское книжное изд-во; 1981. 176 с.
De S.N., Chatterje D.N. An experimental study of the mechanism of action of Vibrio cholerae on the intestinal mucous membrane. J. Path. Bacteriol. 1953; 66(2):559-62.
DiRita V.J., Neely M., Taylor R.K., Bruss P.M. Differential expression of the ToxR regulon in classical and El Tor biotypes of Vibrio cholerae is due to biotype-specific control over toxT expression. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996; 93(15):7991-95.
Faruque S.M., Nair G.B. Vibrio cholerae Genomics and Molecular Biology. Caister Academic Press, Norfolk, UK; 2008. 218 p.
Finkelstein R.A., Boesman-Finkelstein M., Chang Y., Hдse C.C. Vibrio cholerae hemagglutinin/protease, colonial variation, virulence and detachment. Infect. Immun. 1992; 60:472-8.
Guvener Z.T., McCarter L.L. Multiple regulators control capsular polysaccharide production in Vibrio parahaemolyticus. J. Bacteriol. 2003; 185(18):5431-41.
Hammer B.K., Bassler B.L. Distinct sensory pathways in Vibrio cholerae El Tor and classical biotypes modulate cyclic dimeric GMP levels to control biofilm formation. J. Bacteriol. 2009; 191(1):169-77.
Hilton T., Rosche T., Froelich B., Smith B., Oliver J. Capsular polysaccharide phase variation in Vibrio vulnificus. Appl. Environ. Microbiol. 2006; 72(11):6986-93.
Hitchсock P.J., Brown T.M. Morphological heterogeneity among Salmonella lipopolysaccharide chemotypes in silver-stained polyacrylamide gels. J. Bacteriol. 1983; 154:269-77.
Iwanaga M., Yamamoto K., Higa N., Ichinose Y., Nakasone N., Tanabe M. Culture conditions for stimulating cholera toxin production by Vibrio cholerae O1 El Tor. Microbiol. Immunol. 1986; 30:1075-83.
Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T. Nature. 1970; 227:680-5.
Nesper J., Lauriano C.M., Klose K.E., Kapfhammer D., Kraiβ A., Reidl J. Characterization of Vibrio cholerae O1 El Tor galU and galE mutants: influence on lipopolysaccharide structure, colonization, and biofilm formation. Infect. Immun. 2001; 69(1):435-45.
Svennerholm A.M., Wiklund G. Rapid GM1-enzyme-linked immunosorbent assay with visual reading for identification of Escherichia coli heat-labile enterotoxin. J. Clin. Microbiol. 1983; 17:596-600.
Yildiz F.H., Lie X.S., Heydorn A., Schoolnik G.K. Molecular analysis of rugosity in a Vibrio cholerae O1 El Tor phase variant. Mol. Microbiol. 2004; 53(2):497-515.