Влияние специфических бактериофагов и гентамицина на морфологию и везикулообразование бактерий Yersinia pestis EV

СтатьяПРОБ ОСОБ ОПАС ИНФ. 2019; № 2: 50–54. DOI:10.21055/0370-1069-2019-2-50-54

Дудина Л.Г.^[1,2]

Малкова М.А.^[1,2]

Чернядьев А.В.^[2]

Литвинец С.Г.^[2]

Бывалов А.А.^[1,2]

^[1]Институт Физиологии КНЦ УрО РАН

^[2]«Вятский государственный университет»

Материалы и методы.Материалы и методы. В работе использовали вакцинный штамм Y. pestis EV линии НИИЭГ, бактериофаги чумной Покровской и псевдотуберкулезный диагностический. Микробную культуру выращивали на плотной и в жидкой питательных средах при температуре 27 °С в течение 20–24 ч. Совместную инкубацию бактерий и бактериофага или гентамицина проводили при температуре 27 °С в течение 20 мин или 37 °С в течение 2 ч соответственно. Препараты культур исследовали методом просвечивающей электронной микроскопии.Результаты и обсуждение.Результаты и обсуждение. Проведена оценка влияния условий культивирования и различных стрессорных факторов на процесс везикулообразования клетками вакцинного штамма Y. pestis EV. Определены характер и выраженность морфофункциональных изменений в клетках Y. pestis EV в ответ на воздействие бактериофагами (чумной Покровской и псевдотуберкулезный) или антибиотиком (гентамицин). Установлено, что совместная инкубация в течение 20 мин Y. pestis EV с бактериофагом Покровской или гентамицином приводит к увеличению продукции внеклеточных везикул и сопровождается развитием дегенеративных изменений бактериальных клеток.

Yersinia pestis

бактериофаг

антибиотикорезистентность

электронная микроскопия

Антибактериальные средства

Бактерии

Бактериофаги

Бомбы

Внеклеточные везикулы

Гентамицины

Карповые

Культура

Методы

Микроскопия

Особо опасные инфекции

Питательность

Работа

Температура

Трехмерная электронная микроскопия

Характер

Чума

Электроны

Plague outbreak situation reports 2017. World Health Organization Regional Office for Africa. [Электронный ресурс]. URL: http://www.afro.who.int/health-topics/plague/plague-outbreaksituation-reports (дата обращения 16.12.2017).http://www.afro.who.int/health-topics/plague/plague-outbreaksituation-reports

Plague outbreak situation reports 2017. World Health Organization Regional Office for Africa. [Электронный ресурс]. URL: http://www.afro.who.int/health-topics/plague/plague-outbreaksituation-reports (дата обращения 16.12.2017).http://www.afro.who.int/health-topics/plague/plague-outbreak-situation-reports

Cabanel N., Bouchier C., Rajerison M., Carniel E. Plasmidmediated doxycycline resistance in a Yersinia pestis strain isolated from a rat. Int. J. Antimicrob. Agents. 2018; 51(2):249–54. DOI: 10.1016/j.ijantimicag.2017.09.015..
DOI: 10.1016/j.ijantimicag.2017.09.015

Galimand M., Carniel E., Courvalin P. Resistance of Yersinia pestis to antimicrobial agents. Antimicrob. Agents Chemother. 2006; 50(10):3233–36. DOI: 10.1128/AAC.00306-06..
DOI: 10.1128/AAC.00306-06

Welch T.J., Fricke W.F., McDermott P.F., White D.G., Rosso M.L., Rasko D.A., Mammel M.K., Eppinger M., Rosovitz M.J., Wagner D., Rahalison L., Leclerc J.E., Hinshaw J.M., Lindler L.E., Cebula T.A., Carniel E., Ravel J. Multiple antimicrobial resistance in plague: an emerging public health risk. PLoS ONE. 2007; 2(3):e309. DOI: 10.1371/journal.pone.0000309..
DOI: 10.1371/journal.pone.0000309

Filippov A.A., Sergueev K.V., He Y., Huang X.Z., Gnade B.T., Mueller A.J., Fernandez-Prada C.M., Nikolich M.P. Bacteriophage therapy of experimental bubonic plague in mice. Adv. Exp. Med. Biol. 2012; 954:337–48. DOI: 10.1007/978-1-4614-3561-7_41..
DOI: 10.1007/978-1-4614-3561-7_41

Manning A.J., Kuehn M.J. Contribution of bacterial outer membrane vesicles to innate bacterial defense. BMC Microbiol. 2011; 11:258. DOI: 10.1186/1471-2180-11-258..
DOI: 10.1186/1471-2180-11-258

Olsen I., Amano A. Outer membrane vesicles offensive weapons or good Samaritans? J. Oral Microbiol. 2015; 7:27468. DOI: 10.3402/jom.v7.27468..
DOI: 10.3402/jom.v7.27468

Eddy J.L., Gielda L.M., Caulfield A.J., Rangel S.M., Lathem W.W. Production of Outer Membrane Vesicles by the Plague Pathogen Yersinia pestis. PLoS ONE. 2014; 9(9):e107002. DOI: 10.1371/journal.pone.0107002..
DOI: 10.1371/journal.pone.0107002

Kolodziejek A.M., Caplan A.B., Bohach G.A., Paszczynski A.J., Minnich S.A., Hovdea C.J. Physiological Levels of Glucose Induce Membrane Vesicle Secretion and Affect the Lipid and Рrotein Composition of Yersinia pestis Cell Surfaces. Appl Environ Microbiol. 2013; 79(14):4509–14. DOI: 10.1128/AEM.00675-13..
DOI: 10.1128/AEM.00675-13

Reynolds E.S. The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy. J. Cell Biol. 1963; 17:208–12. PMID: 13986422. PMCID: PMC2106263.

Collins B.S. Gram-negative outer membrane vesicles in vaccine development. Discov. Med. 2011; 12(62):7–15. PMID: 21794204.

van Niel G., D'Angelo G., Raposo G. Shedding light on the cell biology of extracellular vesicles. Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. 2018; 19(4):213–28. DOI: 10.1038/nrm.2017.125..
DOI: 10.1038/nrm.2017.125

Klimentová J., Stulík J. Methods of isolation and purification of outer membrane vesicles from gram-negative bacteria. Microbiol. Res. 2015; 170:1–9. DOI: 10.1016/j.micres.2014.09.006..
DOI: 10.1016/j.micres.2014.09.006

Jan A.T. Outer Membrane Vesicles (OMVs) of Gramnegative Bacteria: A Perspective Update. Front. Microbiol. 2017; 8:1053. PMID: 28649237. DOI: 10.3389/fmicb.2017.01053..
DOI: 10.3389/fmicb.2017.01053

Anisimov A.P., Lindler L.E., Pier G B. Intraspecific Diversity of Yersinia pestis. Clin. Microbiol. Rev. 2004; 17(2):434– 64. DOI: 10.1128/CMR.17.2.434-464.2004..
DOI: 10.1128/CMR.17.2.434-464.2004

Schwechheimer C., Kuehn M.J. Outer-membrane vesicles from Gram-negative bacteria: biogenesis and functions. Nat. Rev. Microbiol. 2015; 13(10):605–19. DOI: 10.1038/nrmicro3525..
DOI: 10.1038/nrmicro3525

Wang W., Chanda W., Zhong M. The relationship between biofilm and outer membrane vesicles: a novel therapy overview. FEMS Microbiol. Lett. 2015; 362(15):fnv117. DOI: 10.1093/femsle/fnv117..
DOI: 10.1093/femsle/fnv117

Schachterle J.K., Stewart R.M., Schachterle M.B., Calder J.T., Kang H., Prince J.T., Erickson D.L. Yersinia pseudotuberculosis BarA-UvrY Two-Component Regulatory System Represses Biofilms via CsrB. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2018; 8:323. DOI: 10.3389/fcimb.2018.00323. PMID: 30280093..
DOI: 10.3389/fcimb.2018.00323

Язык текста: Русский

ISSN: 0370-1069