Цель работы — разработать методику оценки метаболических изменений кожных лоскутов на ножке методом спектрофлуориметрии при хирургическом лечении новообразований век. Материал и методы. Четырнадцати пациентам (средний возраст — 74,50 ± 7,14 года) было проведено хирургическое лечение новообразований век с замещением дефекта ткани лоскутами на ножке. Площадь поражения век составляла до 90 [%]. При гистологическом исследовании в 100 [%] случаев определилась базальноклеточная карцинома. Оценка метаболических изменений кожи в пересаженном лоскуте, а также в симметричной зоне парного глаза проводилась с помощью спектрофлуориметрии на 3-и сутки и через 3 мес после операции. С каждого участка снимался ряд последовательных спектров флуориметрических показателей, после чего вычислялись средние значения показателя метаболического сдвига. Результаты. Выявлены различия спектрофлуориметрических показателей метаболического сдвига участка с пересаженным лоскутом и симметричного участка парного глаза на 3-и сутки (p = 0,00058) и через 3 мес после операции (p = 0,0317). Полученные результаты свидетельствуют о частичном сохранении гипоксического состояния кожных покровов на 3-и послеоперационные сутки и полном восстановлении трофики спустя 3 мес после хирургического лечения (p = 0,043), а также о развитии рубцовых изменений пересаженного лоскута к этому сроку наблюдения. Заключение. Разработана методика оценки метаболических изменений кожи век, позволившая определить значения нормальных спектрофлуориметрических показателей в этой области, а также выявить изменения показателей метаболического сдвига в пересаженных лоскутах на ножке в ранние послеоперационные сроки и на протяжении всего периода исследования. Спустя 3 мес после хирургического лечения показатели метаболических изменений в пересаженном лоскуте на ножке приближаются к нормальным значениям.
Bakhshullaevich CS, Sadriddinovich IZ. A differentiated approach to the choice of reconstructive plastic surgery for malignant tumors of the eyelid. International Scientific Research Journal. 2022; 3 (7): 603–14. doi: 10.17605/OSF.IO/JEM6T.
DOI: 10.17605/OSF.IO/JEM6T
Бровкина А.Ф., Панова И.Е., Саакян С.В. Офтальмоонкология: новое за последние два десятилетия. Вестник офтальмологии. 2014; 130 (6): 13–9.
Brodowski R, Pakla P, Dymek M, et al. Observations on surgical reconstructive management following the excision of malignant neoplasms of the eyelid and periocular area. Advances in Clinical and Experimental Medicine. 2019; 28 (4): 535–9. doi: 10.17219/acem/90770.
DOI: 10.17219/acem/90770
Саакян С.В., Харлампиди М.П., Мякошина Е.Б., Тацков Р.А., Гусев Г.А. Радиохирургическое лечение доброкачественных опухолей век малых размеров. Сибирский научный медицинский журнал. 2019; 39 (4): 127–36. doi: 10.15372/SSMJ20190416.
DOI: 10.15372/SSMJ20190416
Wang L, Shan Y, Dai X, et al. Clinicopathological analysis of 5146 eyelid tumors and tumor-like lesions in an eye center in South China, 2000–2018: a retrospective cohort study. BMJ Open. 2021; 11 (1): e041854. doi: 10.1136/bmjopen-2020-041854.
DOI: 10.1136/bmjopen-2020-041854
Бровкина А.Ф. Офтальмоонкология: руководство для врачей. Москва: Медицина; 2002.
Лихванцева В.Г. Опухоли век: клиника, диагностика, лечение. Москва: ГЭОТАР-Медиа; 2007.
Мулдашев Э.Р., Салихов А.Ю., Галимова В.У. и др. Хирургическое лечение обширных злокачественных новообразований нижних век. Сибирское медицинское обозрение. 2006; 42 (5): 15–7.
Лазаренко В.И., Полежаева Н.С., Гарькавенко В.В. и др. Новообразования век: совершенствование тактики и способов органосохранного лечения. Красноярск: Амальгама. 2015.
Филатова И.А., Киселева Т.Н., Луговкина К.В., Гусева Н.В., Павленко Ю.А. Акустические характеристики посттравматических рубцов тканей век. Российский офтальмологический журнал. 2022; 15 (2): 130–4. doi: 10.21516/2072-0076-2022-15-2-130-134.
DOI: 10.21516/2072-0076-2022-15-2-130-134
Филатова И.А., Романова И.А. Возможность прогнозирования риска отторжения свободного полнослойного кожного аутотрансплантата при реконструкции век. Российский офтальмологический журнал. 2011; 4 (4): 71–5.
Киселева Т.Н., Котелин В.И., Лосанова О.А., Луговкина К.В. Неинвазивные методы оценки гемодинамики переднего сегмента глаза: перспективы применения в клинической практике. Офтальмология. 2017; 14 (4): 283–90. doi.org/10.18008/1816-5095-2017-4-283-290
Rigoulet M, Bouchez CL, Paumard P, et al. Cell energy metabolism: An update. Biochim Biophys Acta Bioenerg. 2020; 1861 (11): 148276. doi: 10.1016/j.bbabio.2020.148276.
DOI: 10.1016/j.bbabio.2020.148276
Salmina AB, Gorina YV, Komleva YK, et al. Early life stress and metabolic plasticity of brain cells: Impact on neurogenesis and angiogenesis. Biomedicines. 2021; 9 (9): 1092. doi: 10.3390/biomedicines9091092.
DOI: 10.3390/biomedicines9091092
Kamel K, O'Brien CJ, Zhdanov AV, et al. Reduced oxidative phosphorylation and increased glycolysis in human glaucoma lamina cribrosa cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2020; 61 (13): 4. doi: 10.1167/iovs.61.13.4.
DOI: 10.1167/iovs.61.13.4
Салмина А.Б., Салмин В.В., Фролова О.В. и др. Лазериндуцированная аутофлуоресценция для оценки метаболизма и гемодинамики головного мозга. Анналы клинической и экспериментальной неврологии. 2011; 5 (3): 32–9.
Бочкарева А.Н., Егоров В.В., Смолякова Г.П., Банщиков П.А. Повышение эффективности хирургического лечения злокачественных новообразований век эпителиального происхождения при использовании метода аутофлуоресценции. Саратовский научно-медицинский журнал. 2020; 16 (2): 587–91.
Нероев В.В., Гарькавенко В.В., Салмин В.В. Спектрофлуориметрическое исследование зоны лимба у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой. Российский офтальмологический журнал. 2021; 14 (4): 60–4. doi.org/10.21516/2072-0076-2021-14-4-60-64
Нероев В.В., Гарькавенко В.В., Шапиро Л.А., Салмин В.В. Оценка состояния электрогенеза сетчатки при ультрафиолетовом спектрофлуориметрическом исследовании глаза. Российский офтальмологический журнал. 2020; 13 (2): 41–4. doi.org/10.21516/2072-0076-2020-13-2-41-44
Salmin V., Gar’kavenko V., Levchenko J., et al. UVA-induced autofluorescence spectroscopy in ophthalmology. In: Asia Communications and Photonics Conference 2014. OSA Technical Digest (online). Optica Publishing Group; 2014, paper ATh3A.203
Zhao RZ, Jiang S, Zhang L, et al. Mitochondrial electron transport chain, ROS generation and uncoupling (Review). Int J Mol Med. 2019; 44 (1): 3–15. doi: 10.3892/ijmm.2019.4188.
DOI: 10.3892/ijmm.2019.4188
Heikal AA. Intracellular coenzymes as natural biomarkers for metabolic activities and mitochondrial anomalies. Biomark Med. 2010; 4 (2): 241–63. doi: 10.2217/bmm.10.1.
DOI: 10.2217/bmm.10.1
Kolenc OI, Quinn KP. Evaluating cell metabolism through autofluorescence imaging of NAD(P)H and FAD. Antioxid Redox Signal. 2019; 30 (6): 875–89. doi: 10.1089/ars.2017.7451.
DOI: 10.1089/ars.2017.7451