Цель исследования - оценить эффективность монотерапии L-карнитином (LК), ацетил-L-карнитином (АLК) и их комбинации для улучшения подвижности сперматозоидов и общей способности эякулята к связыванию свободных радикалов кислорода. Дизайн: рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование.Место проведения: отделение андрологии, отдел внутренней медицины, политехнический университет Марке, Италия.Пациенты: 60 мужчин с бесплодием в возрасте 20–40 лет со следующими исходными критериями: концентрация сперматозоидов > 20 × 10 6 / мл, прогрессивная подвижность < 50 [%], сперматозоиды с нормальной морфологией > 30 [%]. Исследование завершили 59 больных.Вмешательство: пациенты получали по двойной слепой схеме 3 г LК в сутки, 3 г АLК в сутки, комбинацию 2 г LК + 1 г АLК в сутки или плацебо. Исследование состояло из 1 мес включения, 6 мес терапии и 3 мес наблюдения.Основной оцениваемый критерий: различия в параметрах эякулята, использованных для отбора пациентов, и различия в общей способности семенной плазмы к связыванию свободных радикалов кислорода.Результаты: у пациентов, получавших АLК в виде моно- или комбинированной терапии с LК, наблюдалось улучшение подвижности сперматозоидов (общей и прогрессивной, включая кинетические характеристики, определяемые компьютерным анализом эякулята). Комбинированная терапия позволила статистически значимо улучшить прямую прогрессивную подвижность через 3 мес. Также отмечалось увеличение общей способности семенной плазмы к связыванию гидроксильных и пероксильных радикалов кислорода, которая положительно коррелировала с улучшением подвижности сперматозоидов. У пациентов с более низкими исходными показателями подвижности и общей связывающей способности семенной плазмы показана более высокая эффективность лечения.Выводы: применение LК и АLК эффективно в увеличении подвижности сперматозоидов у пациентов с идиопатической астенозооспермией и улучшении общей способности семенной плазмы к связыванию свободных радикалов в этой же группе больных.Автор перевода: К. А. Ширанов (кафедра урологии ГБОУ ВПО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России, Ростов-на-Дону)
Bremer J. Carnitine-metabolism and functions. Physiol Rev 1983;63:1420–80.
Jeulin C., Dacheux J. L., Soufir J. C. Uptake and release of free L-carnitine by boar epididymal spermatozoa in vitro and subsequent acetylation rate. J Reprod Fertil 1994;100:263–71.
Di Lisa F., Barbato R., Manebo R., Siliprandi N. Carnitine and carnitine esters in mitochondrial metabolism and function. In: De Jong J. W., Ferrari R., eds. The carnitine system. A new therapeutical approach to cardiovascular diseases. Dordrecht: Kluwer Academic, 1995:21–38.
Enomoto A., Wempe M. F., Tsuchida H. et al. Molecular identification of a novel carnitine transporter specific to human testis. Insights into the mechanism of carnitine recognition. J Biol Chem 2002;39:36262–71.
Bohmer T., Johansen L. Carnitinebinding related suppressed oxygen uptake by spermatozoa. Arch Androl 1978;1:321–4.
Jeulin C., Lewin L. M. Role of free L-carnitine and acetyl-L-carnitine in post-gonadal maturation of mammalian spermatozoa. Hum Reprod Update 1996;2:87–102.
Radigue C., Es-Slami S., Soufir J. C. Relationship of carnitine transport across the epididymis to blood carnitine and androgens in rats. Arch Androl 1996;37:27–31.
Alvarez J. G., Storey B. Spontaneous lipid peroxidation in rabbit epididymal spermatozoa: its effect on sperm motility. Biol Reprod 1982;27:1102–8.
Aitken R. J., Clarkson J. S. Cellular basis of defective sperm function and its association with the genesis of reactive oxygen species by human spermatozoa. J Reprod Fertil 1987;81:459–69.
Aitken R. J., Clarkson J. S., Fishel S. Generation of reactive oxygen species, lipid peroxidation and human sperm function. Biol Reprod 1989;40:183–97.
Rao B., Soufir J. C., Martin M., David G. Lipid peroxidation in human spermatozoa as related to midpiece abnormalities and motility. Gamete Res 1989;24:127–34.
Suleiman S. A., Ali M. E., Zaki Z. M. et al. Lipid peroxidation and human sperm motility: protective role of vitamin E. J Androl 1996;17:530–7.
Aitken R. J., Krausz C. Oxidative stress, DNA damage and the Y chromosome. Reproduction 2001;122:497–506.
Aitken R. J., Baker M. A. Reactive oxygen species generation by human spermatozoa: a continuing enigma. Int J Androl 2002;25:191–4.
Balercia G., Moretti S., Vignini A. et al. Role of nitric oxide concentration on human sperm motility. J Androl 2004;25:245–9.
Winston G. W., Regoli F., Dugas A. J. Jr et al. A rapid chromatographic assay for determining oxyradical scavenging capacity of antioxidants and biological fluids. Free Radic Biol Med 1998;24:480–93.
Regoli F., Winston G. W. Quantification of total antioxidant scavenging capacity (TOSC) of antioxidants for peroxynitrite, peroxyl radicals and hydroxyl radicals. Toxicol Appl Pharmacol 1999;156:96–105.
Balercia G., Mantero F., Armeni T. et al. Oxyradical scavenging capacity toward different reactive species in seminal plasma and sperm cells. A possible influence on kinetic parameters. Clin Chem Lab Med
Lenzi A., Culasso F., Gandini L. et al. Placebo-controlled, double blind, cross-over trial of glutathione therapy in male infertility. Hum Reprod 1993;8:1657–62.
Balercia G., Mosca F., Mantero F. et al. Conezyme Q10 supplementation in infertile men with idiopathic asthenozoospermia: an open uncontrolled pilot study. Fertil Steril 2004;81:93–8.
Costa M., Canale D., Filicori M. et al. L-сarnitine in idiopathic asthenozoospermia: a multicenter study. Andrologia 1994;26:155–9.
Vicari E., Calogero A. E. Effects of treatment with carnitines in infertile patients with prostato-vesiculo-epididymitis. Hum Reprod 2001;16:2338–42.
Vicari E., La Vignera S., Calogero A. E. Antioxidant treatment with carnitine is effective in infertile patients with prostatovesiculo-epididymitis and elevated seminal leukocyte concentration after treatment with nonsteroidal anti-inflammatory compounds. Fertil Steril 2002;78:1203–8.
Lenzi A., Lombardo F., Sgrò P. et al. Use of carnitine therapy in selected cases of male factor infertility: a double blind crossover trial. Fertil Steril 2003;79:292–300.
Lenzi A., Sgrò P., Salacone P. et al. Placebo controlled double blind randomized trial on the use of L-carnitine and L-acetylcarnitine combined treatment in asthenozoospermia. Fertil Steril 2004;81:1578–84.
Kobayashi A., Fujisawa S. Effect of L-carnitine on mitochondrial acyl-carnitine, acyl-coenzyme A and high energy phosphate in ischemic dog hearts. J Mol Cell Cardiol 1994;26:499–508.
World Health Organization. Laboratory manual for the examination of human semen and semen-cervical mucus interaction. 4th ed. Cambridge: Cambridge University Press, 1999.
Lewis S., Boyle P., McKinney M.B. et al. Total antioxidant capacity of seminal plasma is different in fertile and infer tile men. Fertil Steril 1995;64:868–70.
Rhemrev J. P., Van Overveld F. W., Haenen G. R. et al. Quantification of the nonenzymatic fast and slow TRAP in a postaddition assay in human seminal plasma and the antioxidant contribution of various seminal compounds. J Androl 2000;21:913–20.
Dayanandan A., Kumar P., Panneerselvam C. Protective role of L-carnitine on liver and heart lipid peroxidation in atherosclerotic rats. J Nutr Biochem 2001;12:254–7.
Arockia Rani P. J., Panneerselvam C. Carnitine as a free radical scavenger in aging. Exp Gerontol 2001;36:1713–26.
Arockia Rani P. J., Panneerselvam C. Effects of L-carnitine on brain lipid peroxidation and antioxidant enzymes in old rats. J Gerontol 2002;57: B134–7.
Arduini A. Carnitine and its acyl estersas secondary antioxidants? Am Heart J 1992;123:1726–7.