Мужской фактор вносит значительный вклад в проблему бесплодного брака. Причиной бесплодия может быть изменение морфологических и/или функциональных характеристик половых клеток. В работе представлены результаты исследования 122 образцов эякулята, из них 55 образцов с нормальной (≥ 15 млн/мл) концентрацией сперматозоидов (1-я группа) и 67 образцов с концентрацией < 0,01) в образцах эякулята с нормальной концентрацией сперматозоидов (1-я группа), что указывает на наличие выраженного блока сперматогенеза на стадии профазы I мейоза. В образцах эякулята 2-й группы (с концентрацией < 1 млн/мл (криптозооспермия или тяжелая форма олигозооспермии) (2-я группа). Для всех выполняли стандартное спермиологическое исследование (WHO, 2010) и количественный кариологический анализ незрелых половых клеток эякулята (ККА НПК) (патент Л.Ф. Курило № 2328736,2007 г.). Выявлено, что показатели ККА НПК значимо различаются в 2 проанализированных группах. Доля НПК на стадиях прелептотены-зиготены и пахитены достоверно выше (p < 0,01) в образцах эякулята с нормальной концентрацией сперматозоидов (1-я группа), что указывает на наличие выраженного блока сперматогенеза на стадии профазы I мейоза. В образцах эякулята 2-й группы (с концентрацией< 1 млн/мл) значимо выше доля сперматоцитов II и сперматид, что говорит о наличии выраженного блока сперматогенеза на стадии формирования сперматозоидов (спермиогенеза). В 58 [%] образцов эякулята из 1-й группы индекс НПК превышал нормативные показатели. В большинстве образцов 2-й группы индекс НПК не рассчитывали из-за недостаточного количества сперматозоидов. У всех обследованных пациентов с подозрением на азооспермию при ККА НПК были обнаружены сперматозоиды (44 образца из 2-й группы). Таким образом, пациентам с предполагаемой азооспермией выполнение ККА НПК может быть рекомендовано как альтернатива диагностической биопсии яичка или его придатка. Оценка НПК на разных стадиях сперматогенеза, неинвазивность данного метода, относительная быстрота выполнения и возможность многократного повторения исследования без риска для здоровья пациента делают метод ККА НПК уникальным при оценке состояния сперматогенеза и его динамики.
Райцина С.С. Гормональный контроль сперматогенеза у млекопитающих. В кн.: Сперматогенез и его регуляция. Под ред. Л.О. Даниловой. М.: Наука, 1983. С. 3–61..
Захидов С.Т., Кулибин А.Ю., Маршак Т.Л. Стволовые клетки и клетки ниши сперматогенной системы. В кн.: Биология стволовых клеток и клеточные технологии: В 2 т. Под ред. М.А. Пальцева. М.: Медицина; Шико, 2009. Т. 2. С. 311–380..
Черных В.Б. AZF делеции – частая генетическая причина бесплодия у мужчин: современное состояние исследований. Проблемы репродукции 2009;1:10–5..
Курило Л.Ф., Штаут М.И. Генетические и эпигенетические механизмы регуляции, хронология и динамика сперматогенеза у млекопитающих. Андрология и генитальная хирургия 2015;(1):31–40..
Брагина Е.Е., Сорокина Т.М., Арифулин Е.А., Курило Л.Ф. Генетически обусловленные формы патозооспермии. Обзор литературы и результаты исследований. Андрология и генитальная хирургия 2015;16(3):29– 39..
Курило Л.Ф. Возможности цитогенетического исследования мейоза при мужском бесплодии. Цитология и генетика 1989;23(2):63–70..
Курило Л.Ф. Гаметогенез человека: выявление и анализ аномалий хромосом и гамет в целом, тестирование гаметотоксического эффекта повреждающих факторов. Лабораторное дело 1989;(10):4–8..
Захидов С.Т. Процессы нормального и атипичного сперматогенеза у животных. Автореф. дис. … д-ра биол. наук. М., 1993. 45 с..
Рузен-Ранге Э. Сперматогенез у животных. М.: Мир, 1980. 255 с..
Семенова-Тян-Шанская А.Г. Первичные половые клетки зародыша человека в период миграции к зачаткам гонад. Архив анатомии, гистологии и эмбриологии 1969;56(6):3–8..
Wilhelm D., Palmer S., Koopman P. Sex determination and gonadal development in mammals. Physiol Rev 2007;87(1):1–28.
Clermont Y. Renewal of spermatogonia in man. Am J Anat 1966;118:509–524.
Ehmcke J., Schlatt S. A revised model for spermatogonial expansion in man: lessons from non-human primates. Reproduction 2006;132(5):673–80.
Райцина С.С. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М.: Наука, 1985. 207 с..
Голиченков В.А., Иванов Е.А., Никерясова Е.Н. Эмбриология. М.: Академия, 2004. 224 с..
Ченцов Ю.С. Введение в клеточную биологию. М.: Академкнига, 2004. 495 с..
Кузнецов С.Л., Мушкамбаров Н.Н. Гистология, цитология и эмбриология. М.: Медицинское информационное агентство, 2007. 600 с..
Хилькевич Л.В., Курило Л.Ф. Кинетика популяции мужских половых клеток человека в антенатальном периоде онтогенеза. Онтогенез 1992;23(5):506–10..
Богданов Ю.Ф., Коломиец О.Л. Синаптонемный комплекс – индикатор динамики мейоза и изменчивости хромосом. M.: КМК, 2007. 358 с..
Oliva R. Protamines and male infertility. Hum Reprod Update 2006;12(4):417–35.
Руководство ВОЗ по исследованию и обработке эякулята человека. Пер. с англ. Н.П. Макарова. Науч. ред. Л.Ф. Курило. 5-е изд. М.: Капитал Принт, 2012. 291 с..
Курило Л.Ф. Способ цитологической диагностики нарушения сперматогенеза. Патент на изобретение № 2328736 от 01.02.2007..
Курило Л.Ф., Дубинская В.П., Остроумова Т.В. и др. Оценка сперматогенеза по незрелым половым клеткам эякулята. Проблемы репродукции 1995;3:33–8..
Corea M., Campagnone J., Sigman M. The diagnosis of azoospermia depends on the force of centrifugation. Fertility and Sterility 2005;83(4):920–2.
Гамидов С.И., Попова А.Ю., Овчинников Р.И. Необструктивная азооспермия – клинические рекомендации. РМЖ 2015;23(11):595–601..
Okada H., Dobashi M., Yamazaki T. et al. Conventional versus microdissection testicular sperm extraction for nonobstructive azoospermia. J Urol 2002;168(3):1063–7.
Ron-El R., Strauss S., Friedler S. et al. Serial sonography and color flow Doppler imaging following testicular and epididymal sperm extraction. Hum Reproduct 1998;13(12):3390–3.
Аль-Шукри С.Х., Боровец С.Ю., Торопов В.А. и др. Частота обнаружения сперматозоидов и вероятность осложнений после различных видов биопсии яичка (TESA, TESE и MICRO-TESE) у больных с необструктивной азооспермией. Ученые записки СПб ГМУ им. акад. И.П. Павлова 2016;23(1):10–4..
Schlegel P.N. Testicular sperm extraction: microdissection improves sperm yield with minimal tissue excision. Hum Reprod 1999;14:131–5.
Nieschlag E., Behre H.M., Nieschlag S. (eds.) Andrology: male reproductive health and dysfunction. 3rd ed. Berlin; Heidelberg: Springer Verlag, 2010. 629 р.
Курило Л.Ф., Чеботарев А.Н., Шилейко Л.В. и др. Сравнительный анализ соотношения незрелых половых клеток на разных стадиях их дифференцировки в биоптате яичка и эякуляте у пациентов с азоои олигозооспермией. Проблемы репродукции 1997;(1):80–4..
Курило Л.Ф., Королев Ю.Н., Никулина Л.А. и др. Анализ влияния общего облучения на сперматогенез и систему кроветворения крыс. Подходы к первичной профилактике радиационного облучения, приводящей к коррекции индуцированных нарушений. Андрология и генитальная хирургия 2004; (1–2):64–6..
Курило Л.Ф., Макарова Н.П., Шилейко Л.В. Система оценки состояния сперматогенеза человека и млекопитающих. Андрология и генитальная хирургия 2005;4:8–17..
Королев Ю.Н., Курило Л.Ф., Гениатулина М.С., Никулина Л.А. Структурно-функциональные нарушения в семенниках крыс в условиях острого иммобилизационного стресса. Андрология и генитальная хирургия 2012;13(4):25–8..
Павлюченкова С.М. Изучение закономерностей развития мужских половых клеток и клеток Сертоли у мышей после различных экспериментальных воздействий. Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 2015. 23 с..
Игнатьева Е.Л., Курило Л.Ф. Антенатальный оогенез у мышей и его экспериментальная модификация. Онтогенез 1984;15(2):206–11..
Курило Л.Ф., Игнатьева Е.Л., Хилькевич Л.В., Леонов Б.В. Нарушение пролиферации оогониев при введении в культуру яичников плодов окситетрациклина либо 17-β-эстрадиола. Акушерство и гинекология 1985;(4): 53–5..