Метилирование гена SNRPN у мужчин с бесплодием при отсутствии мутаций в известных генах-кандидатах снижения фертильности

СтатьяАНДРО И ГЕНИТАЛ ХИР. 2021; Т. 22, № 1: 52–61. DOI:10.17650/1726-9784-2021-22-1-52-61

Михайленко Д.С.^[1,2]

Симонова О.А.^[1]

Аль-Акел И.^[3]

Соболь И.Ю.^[3]

Едоян Т.А.^[4]

Ефремов Е.А.^[3]

Кузнецова Е.Б.^[2]

Немцова М.В.^[1,2]

^[1]«Медико-генетический НЦ им. акад. Н.П. Бочкова»

^[2]Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова (Сеченовский университет)

^[3]НИИ урологии и интервенционной радиологии им. Н.А. Лопаткина – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России

^[4]«Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И.Пирогова»

Введение. Бесплодие у мужчин представляет собой актуальную проблему современной андрологии и встречается в 45 [%] бесплодных браков. Часть случаев бесплодия у мужчин обусловлена генетическими причинами: точковыми мутациями при ряде моногенных заболеваний, делециями локуса AZF или сочетанием мутаций CFTR; сниженная фертильность ассоциирована также с полиморфными вариантами генов AR и GSTT1/GSTM1. Вместе с тем публикуют все больше данных о роли эпигенетических механизмов в виде аберрантного метилирования и нарушения импринтинга в патологии сперматогенеза. Материалы и методы. В настоящей работе нами исследованы 49 образцов ДНК, полученных из образцов спермы неродственных мужчин с бесплодием, с помощью полимеразной цепной реакции, фрагментного анализа и секвенирования.Результаты. Из первоначальной когорты исключены 5 пациентов: 1 – с длиной повтора 29 (CAG) в экзоне 1 AR, 3 – с нулевыми генотипами по генам GSTT1 и GSTM1, 1 – компаунд гетерозигота delF508/5T по гену CFTR. После этого с помощью метилспецифической полимеразной цепной реакции и бисульфитного секвенирования было определено метилирование импринтированного гена SNRPN. Показано, что аберрантное метилирование SNRPN встречается в 11,4 [%] случаев мужского бесплодия. Суммарно молекулярно-генетические и эпигенетические нарушения были выявлены у 20 [%] пациентов.Заключение. Полученные данные демонстрируют значительную долю (эпи)генетических нарушений в гетерогенной выборке мужчин со сниженной фертильностью.

мужское бесплодие

метилирование ДНК

импринтинг

делеции AZF

мутации CFTR

полиморфизмы AR

GSTM1 и GSTT1

секвенирование

ПЦР

Snrnp коровые белки

Азооспермия

Аллели

Андрология

Больные

Большие данные

Брак

Гетерозигота

ДНК

Контрольные группы

Метилирование

Москва

Мужчины

Мутация

Нарушения импринтинга

Патология

Полимеразная цепная реакция

Последовательностей анализ

Причинная связь

Работа

Российская Федерация

Сперма

Сперматогенез

Тенииды

Фертильность

Экзоны

Чалый М.Е., Ахвледиани Н.Д., Харчилава Р.Р. Мужское бесплодие. Урология 2017;2-S2:4–19..
DOI: 10.18565/urol.2017.2supplement.4-19

Kleisch S. Diagnosis of male infertility: diagnostic work-up of the infertile man. Eur Urol Suppl 2014;13:73–82.
DOI: 10.1016/j.eursup.2014.08.002.

Krausz C., Riera-Escamilla A. Genetics of male infertility. Nat Rev Urol 2018; 15(6):369–84.
DOI: 10.1038/s41585018-0003-3

Colaco S., Modi D. Genetics of the human Y chromosome and its association with male infertility. Reprod Biol Endocrinol 2018;16(1):14.
DOI: 10.1186/s12958-018-0330-5

Souza D.A., Faucz F.R., Pereira-Ferrari L. et al. Congenital bilateral absence of the vas deferens as an atypical form of cystic fibrosis: reproductive implications and genetic counseling. Andrology 2018;6(1):127–35.
DOI: 10.1111/andr.12450

Xiao F., Lan A., Lin Z. et al. Impact of CAG repeat length in the androgen receptor gene on male infertility – a meta-analysis. Reprod BioMed Online 2016;33(1):39–49.
DOI: 10.1016/j. rbmo.2016.03.012

Глыбочко П.В., Аляев Ю.Г., Чалый М.Е., Усачёва О.А. Влияние полиморфизма генов глутатионтрансфераз М1 и Т1 на андрогенный статус и качество эякулята после оперативного лечения варикоцеле. Андрология и генитальная хирургия 2013;1:23–6.
DOI: 10.17650/2070-9781-2013-1-23-26.

Wu W., Lu J., Tang Q. et al. GSTM1 and GSTT1 null polymorphisms and male infertility risk: an updated meta-analysis encompassing 6934 subjects. Sci Rep 2013;3:2258.
DOI: 10.1038/srep02258

Эпигенетика. Под. ред. Эллис С.Д., Дженювейн Т., Рейнберг Д., Капаррос М.Л. Пер.с англ. М.: Техносфера, 2010. 496 с.

Наследственные болезни. Национальное руководство. Под ред. Бочкова Н.П. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2013. 936 с.

Santi D., De Vincentis S., Magnani E., Spaggiari G. Impairment of sperm DNA methylation in male infertility: a metaanalytic study. Andrology 2017;5(4):695– 703.
DOI: 10.1111/andr.12379

Peng H., Zhao P., Liu J. et al. Novel epigenomic biomarkers of male infertility identified by methylation patterns of CpG sites within imprinting control regions of H19 and SNRPN genes. OMICS 2018;22(5):354–64.
DOI: 10.1089/omi.2018.0019

Cheon C.K. Genetics of Prader-Willi syndrome and Prader-Will-Like syndrome. Ann Pediatr Endocrinol Metab 2016;21(3):126–35.
DOI: 10.6065/ apem.2016.21.3.126

Михайленко Д.С., Соболь И.Ю., Сафронова Н.Ю. и др. Частота выявления делеций AZF, мутаций CFTR и длинных аллелей CAG-повтора AR при первичной лабораторной диагностике в гетерогенной группе пациентов с мужским бесплодием. Урология 2019;3:101–7.
DOI: 10.18565/ urology.2019.3.101-107

Nailwal M., Chauhan J.B. Azoospermia factor C subregion of the Y chromosome. J Hum Reprod Sci 2017;10(4):256–60.
DOI: 10.4103/jhrs.JHRS_16_17

Аксельрод Э.В., Миронов К.О., Михайленко Д.С. и др. Разработка и апробация методики на основе мультиплексной полимеразной цепной реакции в режиме реального времени для определения клинически значимых микроделеций в Y-хромосоме. Клиническая лабораторная диагностика 2018;63(2):124–8.
DOI: 10.18821/0869-2084-2018-63-2124-128

Абрамов Д.Д., Кадочникова В.В., Якимова Е.Г. и др. Высокая частота носительства в российской популяции мутаций гена CFTR, ассоциированных с муковисцидозом, и мутаций гена PAH, ассоциированных с фенилкетонурией. Вестник РГМУ 2015;4:32–5.

Chernykh V.B., Stepanova A.A., Beskorovainaya T.S. et al. The frequency and spectrum of mutations and the IVS8-T polymorphism of the CFTR gene in Russian infertile men. Russian Journal of Genetics 2010;46(6):750–57

Yang X., Sun Q., Yuan P. et al. Novel mutations and polymorphisms in the CFTR gene associated with three subtypes of congenital absence of vas deferens. Fertil Steril 2015;104(5):1268–75.e2.
DOI: 10.1016/j.fertnstert.2015.07.1143

Gelfi C., Perego M., Righetti P.G. et al. Rapid capillary zone electrophoresis in isoelectric histidine buffer: high resolution of the poly-T tract allelic variants in intron 8 of the CFTR gene. Clin Chem 1998;44(5):906–13

Курашова Н.А., Беляева Е.В., Ершова О.А. и др. Ассоциация полиморфизма генов GSTT1, GSTM1 с бесплодием у мужчин. Урология 2017;6: 38–42.
DOI: 10.18565/urology.2017.6.38-42

Черных В.Б., Руднева С.А., Сорокина Т.М. и др. Влияние CAG-полиморфизма гена андрогенового рецептора (AR) на сперматогенез у мужчин с бесплодием. Андрология и генитальная хирургия 2015;16(4):55–61.
DOI: 10.17650/2070-9781-2015-16-4-55-61.

Михайленко Д.С., Бабенко О.В., Кириллова Е.А. и др. Комплексный молекулярно-генетический анализ микроделеций области AZF, мутаций гена CFTR и длины CAG-повтора гена AR у мужчин с бесплодием. Проблемы репродукции. 2005;11(6):52–5.

Canale D., Caglieresi C., Moschini C. et al. Androgen receptor polymorphism (CAG repeats) and androgenicity. Clin Endocrinol (Oxf) 2005;63(3):356–61.
DOI: 10.1111/j.1365-2265.2005.02354.x

Katagiri Y., Neri Q.V., Takeuchi T. et al. Androgen receptor CAG polymorphism (Xq11-12) status and human spermatogenesis: a prospective analysis of infertile males and their offspring conceived by intracytoplasmic sperm injection. Int J Mol Med 2006;18(3):405–13

He W., Sun Υ., Zhang S. et al. Profiling the DNA methylation patterns of imprinted genes in abnormal semen samples by next-generation bisulfite sequencing. J Assist Reprod Genet 2020;37(9):2211–21.
DOI: 10.1007/s10815-020-01839-x

El Hajj N., Zechner U., Schneider E. et al. Methylation status of imprinted genes and repetitive elements in sperm DNA from infertile males. Sex Dev 2011;5(2):60–9.
DOI: 10.1159/000323806

Camprubi C., Pladevall M., Grossmann M. et al. Semen samples showing an increased rate of spermatozoa with imprinting errors have a negligible effect in the outcome of assisted reproduction techniques. Epigenetics 2012;7(10):1115–24.
DOI: 10.4161/epi.21743

Lou H., Le F., Hu M. et al. Aberrant DNA methylation of IGF2-H19 locus in human fetus and in spermatozoa from assisted reproductive technologies. Reprod Sci 2019;26(7):997–1004.
DOI: 10.1177/1933719118802052

Ni W., Pan C., Pan Q. et al. Methylation levels of IGF2 and KCNQ1 in spermatozoa from infertile men are associated with sperm DNA damage. Andrologia 2019;51(5):e13239.
DOI: 10.1111/and.13239

Dong H., Wang Y., Zou Z. et al. Abnormal methylation of imprinted genes and cigarette smoking: assessment of their association with the risk of male infertility. Reprod Sci 2017;24(1):114–23.
DOI: 10.1177/1933719116650755

Hammoud S.S., Purwar J., Pflueger C. et al. Alterations in sperm DNA methylation patterns at imprinted loci in two classes of infertility. Fertil Steril 2010;94(5):1728–33.
DOI: 10.1016/j.fertnstert.2009.09.010

Laqqan M., Hammadeh M.E. Alterations in DNA methylation patterns and gene expression in spermatozoa of subfertile males. Andrologia 2018;50(3).
DOI: 10.1111/and.12934

Язык текста: Русский

ISSN: 2070-9781