Введение.Введение. Пересадка роговицы является наиболее успешной и часто выполняемой процедурой аллотрансплантации по сравнению с другими органами и тканями. В мире ежегодно осуществляется более 100 000 трансплантаций роговицы.Цель исследования.Цель исследования. Провести при помощи лазерной конфокальной микроскопии роговицы анализ изменения клеточных структур и плотности иммунных клеток после сквозной кератопластики. Исследовать возможности конфокальной микроскопии в диагностике реакции отторжения трансплантата.Материалы и методы.Материалы и методы. В исследование вошло 34 пациента, перенесших сквозную кератопластику при помутнениях роговицы различной этиологии. Средний возраст пациентов 51,1 ± 13,6 года (от 23 до 76 лет). Срок наблюдения составил от 12 до 36 мес. (24,5 ± 4,84 мес.). Офтальмологическое обследование проводили всем пациентам через 1, 3, 6, 12 мес. и ежегодно после СКП. Всем пациентам для изучения прижизненной морфологии роговицы проводили КМР, при помощи которой оценивался базальный эпителий, суббазальный слой, строма и эндотелий. Иммунные клетки были идентифицированы и оценены по форме, длине отростков и их плотности.Результаты.Результаты. На протяжении всего срока наблюдения у пациентов, перенесших сквозную кератопластику, нами было зарегистрировано 7 случаев (20,5[%]) реакции отторжения. При возникновении реакции отторжения трансплантата у всех пациентов отмечалась аккумуляция гиперрефлективных древовидных структур, преимущественно в суббазальном слое. Кроме того, клетки приобретали более зрелую морфологию (степень 2–3). Плотность ДК составляла 809,17 ± 342,19 (р < 0,001). Была выявлена положительная корреляция между плотностью ДК и реакцией отторжения трансплантата (r-Спирмена = 709, p < 0,001). Также у пациентов отмечались признаки несостоятельности эндотелия с низкой плотностью эндотелиальных клеток и плеоморфизмом, повышение светорассеяния и гиперрефлективность стромы.Выводы.Выводы. В комплексе диагностических мер конфокальная микроскопия может выступать в качестве метода ранней диагностики реакции отторжения трансплантата, определения тяжести патологического процесса, а также контроля эффективности и безопасности проводимого лечения.
Coster D., Williams K. Transplantation of the cornea. Med J Aust. 1992;157(6):405–408. https://doi.org/10.5694/j.1326-5377.1992.tb137253.x..
DOI: 10.5694/j.1326-5377.1992.tb137253.x
George A., Larkin D. Corneal Transplantation: The Forgotten Graft. Amer J Transpl. 2004;4(5):678–685. https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2004.00417.x..
DOI: 10.1111/j.1600-6143.2004.00417.x
Oliva M., Gulati M., Schottman T. Turning the tide of corneal blindness. Ind J Ophthal. 2012;60(5):423. https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2004.00417.x..
DOI: 10.1111/j.1600-6143.2004.00417.x
Jerry Y. Niederkorn J.Y., Larkin D.P. Immune Privilege of Corneal Allografts. Ocul Immunol Inflamm. 2010;18(3):162–171. https://doi.org/10.3109/09273948.2010.486100..
DOI: 10.3109/09273948.2010.486100
Труфанов С.В., Маложен С.А., Крахмалева Д.А., Сурнина З.В., Пивин Е.А., Каспарова Е.А. Антиангиогенная терапия при кератопластике высокого риска. Вестник офтальмологии. 2020;136(4):11–18. https://doi.org/10.17116/oftalma202013604111..
DOI: 10.17116/oftalma202013604111
Shapiro M.B., Mandel M.R., Krachmer J.H. Rejection. In: Bright B. (ed.). Corneal Surgery, Theory, Technique and Tissues. 2nd ed. St. Louis: CV Mosby; 1997, pp. 254–268.
Труфанов С.В., Суббот А.М., Маложен С.А., Саловарова Е.П., Крахмалева Д.А. Факторы риска, клинические проявления, методы профилактики и лечения реакции отторжения трансплантата роговицы Вестник офтальмологии. 2016;132(6):108–116. https://doi.org/10.17116/oftalma20161326108-116..
DOI: 10.17116/oftalma20161326108-116
Panda A., Vanathi M., Kumar A., Dash Y., Priya S. Corneal Graft Rejection. Surv Ophthalmol. 2007;52(4):375396. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2007.04.008..
DOI: 10.1016/j.survophthal.2007.04.008
Monnereau C., Bruinsma M., Ham L., Baydoun L., Oellerich S., Melles G.R. Endothelial cell changes as an indicator for upcoming allograft rejection following descemet membrane endothelial keratoplasty. Am J Ophthalmol. 2014;158:485–495. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2014.05.030..
DOI: 10.1016/j.ajo.2014.05.030
Benetz B., Lass J., Gal R., Sugar A., Menegay H., Dontchev M. et al. Endothelial Morphometric Measures to Predict Endothelial Graft Failure After Penetrating Keratoplasty. JAMA Ophthalmol. 2013;131(5):601. https://doi.org/10.1001/jamaophthalmol.2013.1693..
DOI: 10.1001/jamaophthalmol.2013.1693
Liu Y., Lwin N., Chan N., Mehta J. Use of Anterior Segment Optical Coherence Tomography to Predict Corneal Graft Rejection in Small Animal Models. Inves Ophthalmol Visual Science. 2014;55(10):6736–6741. https://doi.org/10.1167/iovs.14-14475..
DOI: 10.1167/iovs.14-14475
Abou Shousha M., Yoo S., Sayed M., Edelstein S., Council M., Shah R. et al. In Vivo Characteristics of Corneal Endothelium/Descemet Membrane Complex for the Diagnosis of Corneal Graft Rejection. Amer J Ophthalmol. 2017;178:27–37. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2017.02.026..
DOI: 10.1016/j.ajo.2017.02.026
Chirapapaisan C., Abbouda A., Jamali A., Müller R.T., Cavalcanti B.M., Colon C. et al. In Vivo Confocal Microscopy Demonstrates Increased Immune Cell Densities in Corneal Graft Rejection Correlating With Signs and Symptoms. Am J Ophthalmol. 2019;203:26–36. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2019.02.013..
DOI: 10.1016/j.ajo.2019.02.013
Resch M., Marsovszky L., Németh J., Bocskai M., Kovács L., Balog A. Dry Eye and Corneal Langerhans Cells in Systemic Lupus Erythematosus. J Ophthalmol. 2015;2015:1–8. https://doi.org/10.1155/2015/543835..
DOI: 10.1155/2015/543835
Shtein R., Kelley K., Musch D., Sugar A., Mian S. In Vivo Confocal Microscopic Evaluation of Corneal Wound Healing After Femtosecond Laser-Assisted Keratoplasty. Ophthalmic Surgery, Lasers and Imaging Retina. 2012;43(3):205–213. https://doi.org/10.3928/15428877-20120209-01..
DOI: 10.3928/15428877-20120209-01
Tham V.M., Abbott R.L. Corneal graft rejection: recent updates. Int Ophthalmol Clin. 2002;42:105–113. https://doi.org/10.1097/00004397-200201000-00015..
DOI: 10.1097/00004397-200201000-00015
Kheirkhah A., Rahimi Darabad R., Cruzat A., Hajrasouliha A., Witkin D., Wong N. et al. Corneal Epithelial Immune Dendritic Cell Alterations in Subtypes of Dry Eye Disease: A Pilot In Vivo Confocal Microscopic Study. Investig Opthalmol Visual Science. 2015;56(12):7179. https://doi.org/10.1167/iovs.15-17433..
DOI: 10.1167/iovs.15-17433
Chidambaranathan G., Mathews S., Panigrahi A., Mascarenhas J., Prajna N., Muthukkaruppan V. In vivo Confocal Microscopic Analysis of Limbal Stroma in Patients With Limbal Stem Cell Deficiency. Cornea. 2015;34(11):1478–1486. https://doi.org/10.1097/ico.0000000000000593..
DOI: 10.1097/ico.0000000000000593
Müller R., Abedi F., Cruzat A., Witkin D., Baniasadi N., Cavalcanti B. et al. Degeneration and Regeneration of Subbasal Corneal Nerves after Infectious Keratitis. Ophthalmology. 2015;122(11):2200–2209. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2015.06.047..
DOI: 10.1016/j.ophtha.2015.06.047
Hamrah P., Sahin A., Dastjerdi M., Shahatit B., Bayhan H., Dana R. et al. In Vivo Confocal Microscopic Changes of the Corneal Epithelium and Stroma in Patients With Herpes Zoster Ophthalmicus. Amer J Ophthalmol. 2015;159(6):1036–1044.e1. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2015.03.003..
DOI: 10.1016/j.ajo.2015.03.003
Niederer R., Sherwin T., McGhee C. In Vivo Confocal Microscopy of Subepithelial Infiltrates in Human Corneal Transplant Rejection. Cornea. 2007;26(4):501–504. https://doi.org/10.1097/ico.0b013e3180318107..
DOI: 10.1097/ico.0b013e3180318107
Hamrah P., Dana M.R. Corneal antigen-presenting cells. Chem Immunol Allergy. 2007;92:58–70. https://doi.org/10.1159/000099254..
DOI: 10.1159/000099254
Hamrah P., Liu Y., Zhang Q., Dana M. The Corneal Stroma Is Endowed with a Significant Number of Resident Dendritic Cells. Investig Opthalmol Visual Science. 2003;44(2):581. https://doi.org/10.1167/iovs.02-0838..
DOI: 10.1167/iovs.02-0838
Zhivov A., Stave J., Vollmar B., Guthoff R. In vivo confocal microscopic evaluation of Langerhans cell density and distribution in the normal human corneal epithelium. Graefe’s Arch Clinic Exp Ophthalmol. 2005;243(10):1056–1061. https://doi.org/10.1007/s00417-004-1075-8..
DOI: 10.1007/s00417-004-1075-8
Eckard A., Stave J., Guthoff R. In Vivo Investigations of the Corneal Epithelium With the Confocal Rostock Laser Scanning Microscope (RLSM). Cornea. 2006;25(2):127–131. https://doi.org/10.1097/01.ico.0000170694.90455.f7..
DOI: 10.1097/01.ico.0000170694.90455.f7
Hadden O., Patel D., Gray T., Morris A., Ring C. Multifocal lamellar keratitis following laser in situ keratomileusis. J Cat Refr Surg. 2007;33(1):144–147. https://doi.org/10.1016/j.jcrs.2006.07.043..
DOI: 10.1016/j.jcrs.2006.07.043
Alsuhaibani A., Sutphin J., Wagoner M. Confocal Microscopy of Subepithelial Infiltrates Occurring After Epidemic Keratoconjunctivitis. Cornea. 2006;25(7):778–780. https://doi.org/10.1097/01.ico.0000220773.04155.7a..
DOI: 10.1097/01.ico.0000220773.04155.7a
Hattori T., Takahashi H., Dana R. Novel Insights Into the Immunoregulatory Function and Localization of Dendritic Cells. Cornea. 2016;35(1 Suppl.):49–54. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000001005..
DOI: 10.1097/ICO.0000000000001005
Wang D., Song P., Wang S., Sun D., Wang Y., Zhang Y., Gao H. Laser Scanning In Vivo Confocal Microscopy of Clear Grafts after Penetrating Keratoplasty. BioMed Res Inter. 2016;2016:1–6. https://doi.org/10.1155/2016/5159746..
DOI: 10.1155/2016/5159746